Bioloģiskais mikroskops par audu bloka tilpumu
Bioloģiskais mikroskops ar kondensatoru var pārvietot kondensatoru uz augšu un uz leju, lai tā spilgtums būtu mērens, kā arī var mainīt mainīgā gaismas analizatora apertūru, lai sasniegtu mērenu spilgtumu 9b. Ja gaisma atrodas saulē, kondensatoru var atbilstoši pacelt un attiecīgi palielināt mainīgā optiskā trokšņa apertūru. Ja gaisma ir pārāk spēcīga, kondensatoru var attiecīgi nolaist un krustojuma apertūru attiecīgi samazināt. Ja šajā gadījumā joprojām jūtaties žilbinoši, varat izvēlēties atbilstošu filtru un novietot to uz kronšteina zem kondensatora. Šī tussah var iegūt spilgtumu, kas jūs apmierina. Protams, ir jāiegūst pieredze pēc noteikta laika prakses kondensatora augšējās un apakšējās pozīcijas regulēšanā, lai mainītu optiskā rādījuma apertūras izmēru un izvēlētos piemērotus filtrus.
Ļoti svarīga biomikroskopa problēma ir tā, ka 65 elementu saturs katrā daļā pēc liofilizēšanas un sveķu iestrādāšanas (FD) un liofilizēšanas ir rūpīgi jāapstrādā, lai nesabojātu novērojamās un analizējamās šūnas. Tā kā rentgenstaru mikroanalīze ietver ne tikai daudzus soļus, bet arī maksā daudz, ir ļoti žēl izdarīt nepareizu secinājumu, ja analizētās šūnas ir bojātas šūnas vai mirušas šūnas pēc ilgstošas un daudzpakāpju apstrādes. Piemēram, miokarda šūnām, kas atdalītas ar kolagenāzes apstrādi, ir divas formas: viena ir garš stienis, bet otra ir apaļa. Pēdējā ir mirstoša šūna, kas tiek bojāta šūnu atdalīšanas laikā.
Elektrolītu saturs un sadalījums šajos divu veidu šūnās bioloģiskajā mikroskopā ir ļoti atšķirīgs. Na ir ļoti augsts un K ir ļoti zems apaļajās miokarda šūnās, un ca koncentrācija lineārajos dendritos ir ļoti augsta. Salīdzinot ar citām analītiskajām metodēm, ir pierādīts, ka augstais Na un zemais K apļveida šūnās un augstais ca mitohondrijās ir šūnu membrānas bojājumu rezultāts šūnu atdalīšanas laikā. Šūnu un audu aukstās fiksācijas metode bieži vien ir to nostiprināšana, vispirms atdzesējot, un pēc tam uzglabāt šķidrā slāpeklī. Rūdošā fiksācija ir ļoti svarīga saglabāšanas efektam. Dzīvās šūnas vai svaigi audi ir bagāti ar ūdeni. Dzēšot, nereti notiek tā, ka pirmās tiek sasaldētas un fiksētas tās šūnu vai audu daļas, kas ir tiešā saskarē ar krioprotektoriem (īpaši, dzēšot ar šķidro slāpekli), tādējādi veidojas "čaula", kas kavē centrālās sasalšanu un nostiprināšanos. šūnu daļa. Tāpēc, veicot rentgenstaru mikroanalīzi, bieži tiek konstatēts, ka lielāku šūnu centrā ir ledus kristāli. Lai tas nenotiktu, par dzesēšanas līdzekli izmanto vielu, kuras kušanas temperatūra ir augstāka par šķidrā slāpekļa kušanas temperatūru, bet žūšanas temperatūra ir zemāka par 806 ° C. Šādu vielu ir daudz, taču visvieglāk pieejama ir koncentrēts propāns (viršanas temperatūra-42．120c, kušanas temperatūra-187．10c, molekulmasa-44.1), kam ir ātrākais dzesēšanas ātrums. Bet tā trūkums ir uzliesmojamība.
Bioloģiskais mikroskops var novietot muskuļu šķiedru uz speciāla rāmja, un, kad muskuļu šķiedra saraujas līdz noteiktai fāzei un ir jānostiprina, nekavējoties tiek iedarbināta sprausla, lai šķidrais propāns tiktu izsmidzināts uz muskuļu šķiedras, lai to nomierinātu un fiksētu. to. Pēc tam muskuļu šķiedras tiek izņemtas kopā ar statīvu un ievietotas šķidrā slāpeklī. Ja asins šūnas vai atdalītas šūnas ir fiksētas, vispirms centrifugējiet ar mazu ātrumu, lai koncentrētu šūnas, pārnesiet šūnas uz sudraba mazu mēģeni ar labu siltumvadītspēju un ievietojiet mazo mēģeni šķidrā propānā sasaldēšanai un nostiprināšanai. Fiksējot žurku aizkuņģa dziedzeri Hallas laboratorijā, divi tērauda bloki tika iepriekš atdzesēti ar šķidro hēliju (vai šķidro slāpekli), un divi vara bloki tika novietoti aizkuņģa dziedzera priekšā un aiz tā ar knaiblēm, lai tantes tika dzēstas un fiksētas. Audus vai šūnas var uzglabāt ilgu laiku pēc tam, kad tie ir dzēsti un fiksēti un pārnesti uz šķidro slāpekli.
